沈继龙,Email:shenjilong53@126.com; ORCID: 0000-0002-4755-3687
This study aims to explore the virulence and pathogenicity of ROP16, a rhoptry effector molecule of T. gondii. BALB/c mice were infected with wild type and ROP16I/III gene knockout RH strain of T. gondii. Clinical signs and survival time were observed and histopathology of brain and lung tissues were examined by HE staining. Cytokines of splenocyte in infected animals were detected by qRT-PCR. No significant difference was observed in the pathogenicity between the two groups. HE staining showed no remarkable pathology difference in lung and brain tissues between the two groups of mice. Additionally, deletion of the effector ROP16I/III did not impact expressed level of IL-10, IL-12, TNF-α and IFN-γ mRNA( P>0.05)except for the elevated level of Arg-1 mRNA ( P<0.05). ROP16I/III of type I strain of T.gondii may not be only, if any, the virulence-associated molecule during acute infection. ROP16I/III enhance the Arg-1 expression, which is involved of the early proliferation in host cells.
刚地弓形虫(T.gondii)是一种专性有核细胞内寄生的原虫, 其存在广泛的中间宿主群, 包括人类。猫科动物为其终宿主。全球已经有30%的人口被弓形虫感染, 欧美部分国家甚至高达40%[2], 我国某些地区人群血清学阳性率约7%[3]。此外, 弓形虫病给畜牧业生产带来巨大的损失。弓形虫感染多为隐性感染期, 免疫力正常的感染者无临床表现, 或呈轻度一过性临床症状。但是免疫功能低下的感染者, 可出现严重症状, 例如弓形虫脑炎、肺炎、脉络膜视网膜炎等, 甚至致死[4]。已知弓形虫棒状体分泌的可溶性蛋白(ROP)参与虫体侵袭、增殖、播散及免疫逃逸等。ROP在不同的基因型虫株具有多态性。I型和III型弓形虫的具有激酶活性的ROP16I/III可磷酸化State 3/6, 早期感染驱动巨噬细胞向M2极化, 可使虫体在宿主细胞内大量繁殖, 易导致虫体在全身播散甚至致宿主死亡[5]。研究表明, 我国的弓形虫的优势基因型为Chinese 1, WH3株和WH6株是毒力截然不同的二个虫株, 感染Chinese 1 型WH3株的ROP16缺陷株可以活化Th1和Th17细胞, 颠覆母-胎界面以Th2优势应答为主的免疫偏移, 引起滋养层细胞凋亡, 可导致不良妊娠[6]。研究发现, I型ROP16基因敲除株导致弓形虫在巨噬细胞内的增殖速度高于野生株, 但是感染小鼠的死亡率并没有降低, 提示ROP16并非是早期致死小鼠的关键毒力因子[7]。本课题组前期利用CRISPR-Cas9 技术, 成功获得稳转RH株ROP16I/III基因缺陷虫株[7]。在此基础上, 本研究将体外培养的ROP16I/III基因缺陷虫株腹腔接种BALB/c小鼠, 动态观察感染小鼠的急性期临床发病、脑等组织切片病理及检测脾细胞炎性因子水平, 旨在深入研究效应分子ROP16I/III在急性期致病中的作用。
1.1.1 弓形虫type I型RH株及RHΔ ROP16株 由本实验室传代保存, 复苏后腹腔接种小鼠。
1.1.2 实验动物 雌性6~8周龄SPF级BALB/c小鼠(20~25 g), 由济南朋悦实验动物繁育有限公司提供。
1.1.3 实验试剂 诺唯赞 SYBR Green Master Mix荧光定量试剂盒、 Hi Script ‖ QRT Super Mix for q PCR均购于合肥飒英斯生物公司。氯仿、异丙醇、无水乙醇、4%多聚甲醛均购于安徽欣乐生物有限公司。
1.2.1 BALB/c小鼠速殖子接种 分别收集RH野生型和RHΔ ROP16速殖子, 显微镜下计数并稀释至1 000个/mL, 每组20只小鼠, 每只腹腔注射400 μ L, 观察并记录小鼠出现竖毛、弓背、腹水及活动迟缓的先后顺序及死亡时间。分别在感染后3 d、5 d和7 d, 麻醉状态下, 剖杀小鼠取脾脏组织, -80 ℃冰箱保存、备用。
1.2.2 脑组织和肺组织HE染色 分别于感染后3 d、5 d和7 d, 每组随机取5只小鼠, 无痛麻醉下眼球取血后脱颈处死, 分别取脑组织和肺组织, 置4%多聚甲醛固定24 h后, 石蜡包埋, 3 μ m切片。切片置于65 ℃烤箱过夜, 次日置于二甲苯脱蜡、梯度酒精脱水, 置于苏木精染液3 min, 1%盐酸乙醇分化后水洗, 梯度酒精脱水, 二甲苯透明, 中性树胶封片。
1.2.3 脾组织总RNA提取 从-80 ℃冰箱取出脾组织, 用剪刀剪碎后加入 300 μ L Trizol用匀浆机硏磨后再加入700 μ L Trizol, 提取RNA并测定浓度及纯度。按照Hi Script QRT Super Mix for qPCR说明书逆转录为cDNA备用。
1.2.4 细胞因子引物的设计 根据GenBank中Arg-1、IL-10、IL-12p40、IFN-γ 和TNF-α 的序列, 用Premier 3设计引物, 上海生工生物工程有限公司合成。
Target Primer sequence(5'-3')
Arg-1 F: CAGAAGAATGGAAGAGTCAG
R: CAGATATGCAGGGAGTCACC
IFN-γ F: GGTCAACAACCCACAGGTCC
R: CGACTCCTTTTCCGCTTCC
IL-10 F: GCTCCTAGAGCTGCGGACT
R: TGTTGTCCAGCTGGTCCTTT
TNF-α F: ACGGCATGGATCTCAAAGAC
R: GTGGGTGAGGAGCACGTAGT
IL-12 F: GATGTCACCTGCCCAACTG
R: TGGTTTGATGATGTCCCTGA
GAPDH F: CAACTTTGGCATTGTGGAAGG
R: ACACATTGGGGGTAGGAACAC
1.2.5 细胞因子测定 按照SYBR Green Master Mix荧光定量试剂盒说明书20 μ L体系, 利用罗氏LC96 SW 1.1相对定量检测脾脏细胞因子变化。
取6只8周雌性小鼠, 每组3只, 分别腹腔注射1 200个虫株, 于第5 d无痛脱颈处死, 腹腔灌洗计数虫株数量。
实验数据用Graph Pad Prism 6.02软件进行统计分析, 采用t检验方法分析, 检验水平为α =0.05。
通过腹腔注射相同数量的速殖子建立RHΔ rop16和野生型感染鼠模型, 动态观察二组鼠于感染3 d、5 d、6 d、7 d、8 d小鼠发病(见表1)。
两组动物存活率无差异。 野生型RH感染组第6 d开始出现死亡, RHΔ ROP16感染组小鼠第7 d开始出现死亡, 但两组均在第8 d死亡, 统计学分析两组小鼠存活率之间无统计学差异(P> 0.05)(见图1)。
2.3.1 肺组织切片HE染色显示感染后3 d可见炎性细胞广泛浸润、间质细胞轻度增生, 部分肺泡内可见淤血。感染后第5 d可见广泛炎性细胞浸润、肺毛细血管充血明显, 肺间质细胞明显增生、肺泡壁增厚, 部分肺泡腔闭塞, 重度肺水肿、肺泡间隔破裂, 感染7 d肺严重淤血、水肿, 两者未见明显差异(见图2)。
2.3.2 脑组织切片HE染色显示两组小鼠感染后3 d脑间质均表现轻度疏松、水肿; 随着感染时间的延长, 脑组织间质疏松、水肿渐趋严重, 可见胶质细胞变性及坏死。感染后第7 d, 野生型RH感染小鼠脑组织局部可见大量小细胞增生浸润(见图3), 而同期RHΔ rop16感染小鼠未见异常增生, 感染野生虫株的宿主脑组织病变更严重。
为研究ROP16I/III基因缺陷虫株感染宿主体内炎性免疫应答的特征, qRT-PCR检测脾细胞炎性因子及抑炎因子水平。结果表明, RHΔ rop16株感染鼠脾脏Arg-1 mRNA水平明显低于野生型RH株感染鼠(t3d=2.417, t5d=3.525, t7d=4.863, P均< 0.05)。两株弓形虫感染鼠脾脏IL-10、IL-12和TNF-α mRNA水平差异无统计学意义(IL-10: t3d=2.319, t5d=1.481, t7d=0.911; IL-12: t3d=0.200, t5d=0.589, t7d=1.315; TNF-α : t3d=1.833, t5d=1.313, t7d=1.969; IFN-γ :t3d=0.669, t5d=1.473, t7d=1.664; P均> 0.05)(见图5)。
刚地弓形虫是一种重要的人兽共患性寄生虫。已知世界流行的弓形虫主要分为I、 II和 III型。本实验室报道, 中国大陆人兽间流行的弓形虫基因型为Chinese 1型(代表虫株Wh3、Wh6)等[7]。弓形虫的毒力与某些棒状体蛋白有关。I型和III型虫株的ROP为ROPI/III(L503); 而II型虫株为ROPII(S503)。ROPI/III直接磷酸化Stat3/6信号通路, 在感染早期驱动巨噬细胞向M2极化, 有利于虫体的大量增殖, 导致宿主体内全身播散甚至导死亡[9]。小鼠在感染急性期死亡; 而ROPII则无此活性[10]。相反, 另一虫源性效应分子GRA15I/III无激酶活性, 但GRA15II则可活化NF-Κ b, 诱导巨噬细胞向M1极化, 诱导早期的固有免疫应答发挥抗虫作用。我国的Chinese 1基因型虫株同时携带ROPI/III和GRA1 5II[11], 提示其具有独特的毒力和致病机制。
为了证实I型以及Chinese 1型虫株ROP16I/III与虫株致病性关系, 本课题建立ROP16I/III基因缺陷虫株感染BALB/c小鼠模型, 体内实验研究发现, RHΔ rop16虫株较野生型虫株感染的小鼠, M2极化的标志分子Arg-1明显减少, 提示ROP16I/III促进了Arg-1的表达, 但是虫株对小鼠的毒力并未见明显减弱, 表现为小鼠弓背、竖毛、腹水等弓形虫病症状、生存率及宿主体内增殖无统计学差异。此外, RHΔ rop16组小鼠IL-10表达量未见显著变化, 可能在体内弓形虫不仅感染巨噬细胞, 还可感染DC、Th0、以及NK细胞等其他免疫相关细胞, 这些免疫细胞均可分泌IL-10。以上结果提示, I型以及Chinese 1型虫株的ROP16I/III虽然参与负向调控宿主巨噬细胞并促进虫体在巨噬细胞内增殖, 但其并非唯一的毒力因子。不同基因型弓形虫及其毒力/效应分子在弓形虫病发病机制中的作用, 尚待深入研究。
利益冲突:无
引用本文格式:何佳丽, 陈守斌, 崔雯, 等.弓形虫RH株ROP16I/III基因缺陷虫株感染BALB/c鼠的致病性研究[J].中国人兽共患病学报, 2019, 35(7):620-625. DOI:10.3969/j.issn.1002-2694.2019.00.61
The authors have declared that no competing interests exist.
[1] |
|
[2] |
|
[3] |
|
[4] |
|
[5] |
|
[6] |
|
[7] |
|
[8] |
|
[9] |
|
[10] |
|
[11] |
|
[12] |
|
[13] |
|
[14] |
|
[15] |
|
[16] |
|